Tincion BAAR
Esta tinción demuestra la capacidad de bacterias teñidas de resistir a la decoloración por ácidos y alcoholes. Debido a su alto contenido en lípidos de su pared celular y presencia de ácidos micólicos que aumentan el carácter hidrófobo.
La mezcla en carbol-fuscina capaz de teñir las células en caliente. El carbol facilita la penetración de fuscina en la envoltura celular. Como decolorante orgánico se utiliza una mezcla de ácido y alcohol el Azul de metileno lo usamos como colorante de contraste.Los Bacilo Alcohol Ácido Resistente (BAAR) tras la unión de la fucsina, resisten el tratamiento orgánico y se verán teñidas de rosado/fuscia. El resto de las bacterias se decolorarán y se contrastarán con azul de metileno. El observar BAAR (+) en una muestra de esputo, no significa que esos bacilos sean necesariamente de M. tuberculosis.
Material:
Equipo
· Mechero
· Microscopio óptico
· Platina caliente
· Portaobjetos
Reactivos
· Hisopos
· Frascos goteros
· Aceite de inmersion
· Cristal violeta
· Lugol
· Carbol fucsina
· Alcohol etilico
· Colorante azul de metileno
· Solucion alcohol cetona
· Solucion de alcohol acido
Procedimiento:
primero se va a buscar el material, despues vamos a colocar el punte de tincion se le coloca el frotis para enseguida se fijado en el mechero despues con la fucsina se le agrega hasta que todo el frotis de la muestra quede cubierto de fucsina con el mechero
le vamos a dar fuego pero teniendo cuidado de que no tenga mas que tenga emicion de vapores y de que no llegue a su ponto de ebullición. Esto se hara durante 5min. Depues se va lavar el frotis despues de vamos a colocar el (AAR) durente 1 min. Se lava de nuevo y se le agrega el color de fondo. que eres azul de metileno se lava y lo dejamos estilar y ya despues lo observaremos en el microscopio.
Esta tinción demuestra la capacidad de bacterias teñidas de resistir a la decoloración por ácidos y alcoholes. Debido a su alto contenido en lípidos de su pared celular y presencia de ácidos micólicos que aumentan el carácter hidrófobo.
La mezcla en carbol-fuscina capaz de teñir las células en caliente. El carbol facilita la penetración de fuscina en la envoltura celular. Como decolorante orgánico se utiliza una mezcla de ácido y alcohol el Azul de metileno lo usamos como colorante de contraste.Los Bacilo Alcohol Ácido Resistente (BAAR) tras la unión de la fucsina, resisten el tratamiento orgánico y se verán teñidas de rosado/fuscia. El resto de las bacterias se decolorarán y se contrastarán con azul de metileno. El observar BAAR (+) en una muestra de esputo, no significa que esos bacilos sean necesariamente de M. tuberculosis.
Material:
Equipo
· Mechero
· Microscopio óptico
· Platina caliente
· Portaobjetos
Reactivos
· Hisopos
· Frascos goteros
· Aceite de inmersion
· Cristal violeta
· Lugol
· Carbol fucsina
· Alcohol etilico
· Colorante azul de metileno
· Solucion alcohol cetona
· Solucion de alcohol acido
Procedimiento:
primero se va a buscar el material, despues vamos a colocar el punte de tincion se le coloca el frotis para enseguida se fijado en el mechero despues con la fucsina se le agrega hasta que todo el frotis de la muestra quede cubierto de fucsina con el mechero
le vamos a dar fuego pero teniendo cuidado de que no tenga mas que tenga emicion de vapores y de que no llegue a su ponto de ebullición. Esto se hara durante 5min. Depues se va lavar el frotis despues de vamos a colocar el (AAR) durente 1 min. Se lava de nuevo y se le agrega el color de fondo. que eres azul de metileno se lava y lo dejamos estilar y ya despues lo observaremos en el microscopio.
Observaciones:
Bueno pues al finalizar el procedimiento fuimos a observar la muestra y pues no pudimos indentificar bien ya que la coloracion no estaba bien hecha.
Pero pues en internet buscamos y bajamos imagenes.
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