jueves, 25 de septiembre de 2008

PrAcitca De tincion




Tinción GRAM

La tinción de Gram es uno de los métodos de tinción más importantes en el laboratorio. Su utilidad práctica es indiscutible y en el trabajo microscópico de rutina del Laboratorio de Microbiología las referencias a la morfología celular bacteriana (cocos,bacilos,positivos,negativos, etc.) se basan justamente en la tinción de GRAM.

Material:

Equipo
· Mechero
· Microscopio óptico
· Platina caliente
· Portaobjetos

Reactivos
· Hisopos
· Frascos goteros
· Colorante cristal violeta
· Colorante safranina
· Aceite de inmersión
· Lugol
· Alcohol etílico


Procedimiento:

El proceso de la tinción es la siguiente:
Se toma la muestra que va a ser teñida y se le aplica el primer colorante que es el cristal violeta y se deja durante un minuto.
Después de esto se enjuaga con agua y se aplica el mordiente (yodo lugol) al igual que el primer colorante se deja actuar durante un minuto.
Se enjuaga una vez mas con agua y enseguida se decolora con alcohol cetona.
Ya hecho esto se aplica el 2do. Colorante la safranina y se deja actuar durante un minuto. Por ultimo se lava y se seca la muestra para poder ser observada.


Características

Sobre la base de su reacción a la tinción de Gram, las bacterias pueden dividirse en dos grupos, grampositivas y gramnegativas (en este caso, los términos positivo y negativo no tiene nada que ver con carga eléctrico, sino simplemente designan dos grupos morfológicos distintos de bacterias).Las bacterias gram-positivas y gram-negativas tiñen de forma distinta debido a las diferencias constitutivas en la estructura de su pared. La pared de la célula bacteriana sirve para dar su tamaño y forma al organismo así como para prevenir la lisis osmótica. El material de la pared celular bacteriana que confiere rigidez es el peptidoglicano. La pared de la célula gram-positiva es gruesa y consiste en varias capas interconectadas de peptidoglicano así como algo de ácido teicoico. Generalmente, 80%-90% de la pared de la célula gram-positiva es peptidoglicano. La pared de la célula gram-negativa, por otro lado, contiene una capa mucho más delgada, únicamente de peptidoglicano y está rodeada por una membrana exterior compuesta de fosfolípidos, lipopolisacáridos, y lipoproteínas. Sólo 10% - 20% de la pared de la célula gram-negativa es peptidoglicano.



Observaciones:

Bueno pues esta practica la realizamos como 3 veces ya que cometimos muchos errores en el procedimiento pero pues ya en la ultima si hubo muestras en las que si alcanzaban a identificar las bacterias teñidas.

Practicas de Laboratorio


Tincion BAAR

Esta tinción demuestra la capacidad de bacterias teñidas de resistir a la decoloración por ácidos y alcoholes. Debido a su alto contenido en lípidos de su pared celular y presencia de ácidos micólicos que aumentan el carácter hidrófobo.
La mezcla en carbol-fuscina capaz de teñir las células en caliente. El carbol facilita la penetración de fuscina en la envoltura celular. Como decolorante orgánico se utiliza una mezcla de ácido y alcohol el Azul de metileno lo usamos como colorante de contraste.Los Bacilo Alcohol Ácido Resistente (BAAR) tras la unión de la fucsina, resisten el tratamiento orgánico y se verán teñidas de rosado/fuscia. El resto de las bacterias se decolorarán y se contrastarán con azul de metileno. El observar BAAR (+) en una muestra de esputo, no significa que esos bacilos sean necesariamente de M. tuberculosis.
Material:

Equipo
· Mechero
· Microscopio óptico
· Platina caliente
· Portaobjetos

Reactivos
· Hisopos
· Frascos goteros
· Aceite de inmersion
· Cristal violeta
· Lugol
· Carbol fucsina
· Alcohol etilico
· Colorante azul de metileno
· Solucion alcohol cetona
· Solucion de alcohol acido



Procedimiento:


primero se va a buscar el material, despues vamos a colocar el punte de tincion se le coloca el frotis para enseguida se fijado en el mechero despues con la fucsina se le agrega hasta que todo el frotis de la muestra quede cubierto de fucsina con el mechero
le vamos a dar fuego pero teniendo cuidado de que no tenga mas que tenga emicion de vapores y de que no llegue a su ponto de ebullición. Esto se hara durante 5min. Depues se va lavar el frotis despues de vamos a colocar el (AAR) durente 1 min. Se lava de nuevo y se le agrega el color de fondo. que eres azul de metileno se lava y lo dejamos estilar y ya despues lo observaremos en el microscopio.


Observaciones:


Bueno pues al finalizar el procedimiento fuimos a observar la muestra y pues no pudimos indentificar bien ya que la coloracion no estaba bien hecha.


Pero pues en internet buscamos y bajamos imagenes.